Инфопортал
Назад

Осмотическая резистентность эритроцитов

Опубликовано: 01.02.2020
0
7

Осмотическая резистентность эритроцитов

Для
оценки физико-химических свойств
эритроцитов исследуют резистентность
(стойкость) эритроцитов к различным
воздействиям. Наибольшее распространение
в клинической практике получило
исследование осмотической резистентности
эритроцитов.

При
помещении эритроцитов в изотонический
раствор (0,9% раствор хлорида натрия)
форма и объем клеток не изменяются, так
как количество воды, поступающее в
эритроцит, будет равно количеству воды,
выходящему из него.

В
гипертонических растворах эритроциты
сморщиваются, так как согласно осмотическим
законам жидкость покидает клетку.

В
гипотонических растворах вода поступает
из окружающей среды в эритроциты, они
набухают, увеличиваются в размерах,
оболочка клеток разрывается и гемоглобин
выходит в раствор, окрашивая его в
красный цвет.

Осмотическая
резистентность эритроцитов определяется
такой концентрацией гипотонического
раствора, при которой они не подвергаются
гемолизу. Эритроциты одной и той же
крови обладают неодинаковой осмотической
резистентностью, поэтому различают
начало гемолиза, то есть ту концентрацию
гипотонического раствора, при которой
гемолизу подвергаются наименее стойкие
эритроциты (появляется слабое окрашивание
гипотонического раствора жидкости), и
полный гемолиз – ту концентрацию
гипотонического раствора, при которой
гемолизируются все эритроциты (раствор
ярко окрашен, осадок отсутствует).

Для
работы необходимы:
донорская кровь, гипотонический раствор
хлорида натрия разной концентрации
(0,6%; 0,55%; 0,45%; 0,40%; 0,35%; 0,30%; 0,25%), восемь
пробирок, штатив, глазная пипетка.

Проведение
работы. В
штатив помещают 8 пробирок, в каждую из
которых налито по 2 мл гипотонического
раствора хлористого натрия различной
концентрации (от 0,6% до 0,25%). Затем в каждую
пробирку глазной пипеткой капают по 2
капли дефибринированной крови. После
заполнения всех пробирок кровью их
встряхивают и оставляют стоять в течение
часа при комнатной температуре.

Оформление
протокола.
Записать полученные результаты в
таблицу, оценить их, выявив наличие
полного, частичного гемолиза или
отсутствие его.

Таблица
оформления протокола

№ пробирки

1

2

3

4

5

6

7

8

Концентрация
(%) раствора NaCl
Количество раствора (мл)

0,6

0,55

0,5

0,45

0,4

0,35

0,3

0,25

2.0

2.0

2.0

2.0

2.0

2.0

2.0

2.0

Результаты:

гемолиза
нет (-),

гемолиз

неполный
( -),

гемолиз
полный ( )

Вывод:
Сравнить полученные результаты с
физиологической нормой, дать определение
понятий минимальной и максимальной
резистентности эритроцитов, указать
возможные клинические варианты изменений
этого показателя.

Мокротой
называется патологический секрет,
выделяемый с кашлем из дыхательных
путей. Мокрота собирается в чистую
широкогорлую стеклянную посуду с
закручивающейся крышкой в утренние
часы при кашле, после тщательного
полоскания рта и горла, до приема пищи.
Собирать мокроту за сутки и больше
нецелесообразно, так как длительное
стояние ведет к размножению флоры и
аутолизу клеточных элементов. При
необходимости мокроту сохраняют в
прохладном месте (в холодильнике).

Источником
наиболее ценной информации является
содержимое трахеобронхиального дерева,
полученное при бронхоскопии (промывные
воды бронхов).

При
макроскопическом изучении обращают
внимание на: характер мокроты, количество,
цвет, запах, консистенцию, слоистость,
наличие различные включений.

Характер мокроты
определяется ее составом.

Слизистая
– состоит из слизи (продукта слизистых
желез дыхательных путей). Выделяется
при острых бронхитах, разрешении приступа
бронхиальной астмы.

Осмотическая резистентность эритроцитов

Слизисто-гнойная
– представляет
смесь слизи и гноя, причем слизь
преобладает, а гной включен в виде
комочков или прожилок. Наблюдается при
хронических бронхитах, бронхопневмонии.

Гнойно-слизистая
– содержит слизь и гной (преобладание
гноя, слизь имеет вид тяжей). Характерна
для хронических бронхитов, бронхоэктазии,
абсцедирующей пневмонии.

Гнойная
– не имеет примеси слизи и появляется
в случае открытого в бронх абсцесса
легкого, при прорыве эмпиемы плевры в
бронх.

Слизисто-кровянистая
– состоит
из слизи с прожилками крови или кровяного
пигмента. Отмечается при катарах верхних
дыхательных путей, бронхогенном раке,
пневмонии.

Слизисто-гнойно-кровянистая
– содержит слизь, гной и кровь, чаще
равномерно перемешанные между собой.
Появляется при бронхоэктазах, туберкулезе,
актиномикозе легких, бронхогенном раке.

Кровавое
отделяемое (кровохаркание) –
встречается при туберкулезе, опухолях
бронхов и легкого, ранении легкого,
актиномикозе.

Серозное
отделяемое
– характерно для отека легких, представляет
собой пропотевшую в полость бронхов
плазму крови.

Количество
мокроты (величина
отдельных порций и суточные количества)
зависят от характера заболевания и от
способности больного к отхаркиванию.

Скудное
количество мокроты – характерно для
воспаления дыхательных путей (трахеит,
острый бронхит в начальной стадии,
бронхиальная астма, бронхопневмония).

Обильное
количество мокроты (от 0.5 до 2 л) выделяется
обычно из полостей легочной ткани,
бронхов (бронхоэктатическая болезнь,
абсцесс легкого, прорыв эмпиемы), при
повышенном кровенаполнении легких и
пропотевании в легкие и бронхи большого
количества плазмы крови (отек легких).

Цвет
и прозрачность мокроты
зависят от ее характера и от состава
вдыхаемых частиц.

Слизистая
мокрота – стекловидная, прозрачная;
слизисто-гнойная – стекловидная с
желтым оттенком; гнойно-слизистая –
желто-зеленоватая; гнойная – желто-зеленая;
слизисто-кровянистая – стекловидная
с кровянистым или ржавым оттенком;
слизисто-гнойно-кровянистая – стекловидная
с желтыми комочками, прожилками красного
цвета или ржавыми оттенками;

Мокрота
с инородными примесями имеет цвет этих
примесей: белая у мукомолов, черная у
шахтеров и др.

Запаху мокроты
появляется при длительном стоянии, а
также при задержке мокроты в бронхах
или полостях в легком и обусловлен
деятельностью бактерий, вызывающих
гнилостный распад белков. Свежевыделенная
мокрота обычно не имеет запаха. Мокрота
имеет неприятный запах при бронхоэктатической
болезни, абсцессе легкого, туберкулезе,
злокачественных новообразованиях с
некрозом; зловонный (гнилостный) запах
отмечается при гангрене легкого.

Консистенция
тесно связана
с характером мокроты и может быть вязкой,
густой и жидкой. Вязкость зависит от
содержания слизи и от количества
форменных элементов – лейкоцитов,
эпителия. Наиболее вязкая мокрота
обнаруживается при муковисцидозе и
бронхиальной астме.

Слоистость
мокроты. При
бронхоэктазах, гнилостном бронхите,
абсцессе и гангрене легкого мокрота
при стоянии разделяется на три слоя: на
дне посуды находятся тяжелые элементы
мокроты – гной и детрит, образующийся
вследствие распада легочной ткани;
средний слой составляет серозная
жидкость; в верхнем – плавающие частицы,
содержащие воздух и слизь.

Включения,
патологические элементы,
паразиты в мокроте обнаруживают путем
ее рассмотрения в чашке Петри на белом
или черном фоне, используя лупу.

1)
спирали Куршмана – штопорообразно
извитые трубчатые тела, имеющие
диагностическое значение при бронхиальной
астме;

2)
фибринозные свертки – древовидно
разветвленные образования эластичной
консистенции, имеющие значение при
фибринозном бронхите, реже – при крупозной
пневмонии;

3)
рисовидные тельца (линзы Коха) – плотные
образования творожистой консистенции,
состоящие из детрита, туберкулезных
палочек и эластических волокон;
обнаруживаются при кавернозном
туберкулезе легких;

4)
гнойные пробки Дитриха – состоят из
детрита, бактерий, кристаллов жирных
кислот, встречаются при гангрене легкого;

5)
дифтеритические пленки;

6)
некротизированные кусочки легкого;

7)
частицы опухоли легкого;

8)
друзы актиномицетов;

9)
элементы эхинококка;

10)
случайно попавшие из полости инородные
тела (семена подсолнечника и др.).

Микроскопическое
исследование мокроты.

Микроскопическое
исследование мокроты проводят в свежих
неокрашенных и фиксированных окрашенных
препаратах.

Осмотическая резистентность эритроцитов

Элементы
мокроты, которые обнаруживаются в
нативном препарате, можно разделить на
три основные группы.

  1. Клеточные
    элементы – плоский эпителий (одиночные
    клетки встречаются всегда, множественные
    – при воспалительных явлениях в ротовой
    полости); цилиндрический эпителий
    (встречается при остром катаре верхних
    дыхательных путей, остром бронхите,
    бронхиальной астме); макрофаги «жировые
    шары» (встречаются при раке легкого,
    туберкулезе, актиномикозе), сидерофаги
    – «клетки сердечных пороков», макрофаги
    с гемосидерином (обнаруживают при
    застое в малом круге кровообращения,
    при инфаркте легкого), кониофаги –
    пылевые макрофаги (характерны для
    пневмокониозов и пылевых бронхитов);
    опухолевые клетки; лейкоциты (в слизистой
    мокроте – единичные, в гнойной –
    покрывают все поля зрения); эритроциты
    (единичные могут быть в любой мокроте,
    окрашенной кровью).

  2. Волокнистые
    образования – эластические волокна,
    которые указывают на распад легочной
    ткани при туберкулезе, абсцессе, опухоли,
    коралловые волокна (отложение на
    эластичном волокне жирных кислот и
    мыл) и обызвествленные волокна
    (пропитанные солями извести); фибринозные
    волокна (при фибринозном бронхите,
    крупозной пневмонии, иногда при
    актиномикозе); спирали Куршмана.

  3. Кристаллические
    образования – кристаллы Шарко-Лейдена
    (продукт кристаллизации белков
    распавшихся эозинофилов, встречается
    при бронхиальной астме, глистных
    поражений легких), кристаллы гематоидина
    (обнаруживаются при кровоизлияниях в
    легочную ткань, в некротизированной
    ткани), кристаллы холестерина (встречаются
    при задержке мокроты в полостях –
    туберкулез, абсцесс, эхинококкоз);
    кристаллы жирных кислот – также
    образуются при застое мокроты в полостях
    легкого.

  • Что такое осмотическая резистентность эритроцитов, зачем ее определяютЭритроциты – красного цвета кровяные тельца, как и все «организмы», имеют определенный срок жизнедеятельности.
  • Длительность существования данного компонента определяют интервалом времени, которое начинается с момента образования «красной клетки» до времени ее разрушения организмом человека (впрочем, любым организмом млекопитающего).
  • Лимфатическая система человека добавляет, так называемые, маркеры к уже не пригодным эритроцитам, с помощью которых селезенка определит и выводит непригодные клетки из системы кровообращения человека.

2.2. Определение количества гемоглобина в крови

Для
работы необходимы:
донорская кровь, смеситель (меланжер)
для эритроцитов, камера с сеткой Горяева,
3% раствор хлористого натрия, стаканчик
для разбавляющего раствора, микроскоп,
вата.

Проведение
работы. Ознакомиться
с устройством меланжера и счетной
камеры.

Рис.1.
Смесители
а
– для подсчета эритроцитов; б – для
подсчета лейкоцитов;
1
– капилляр; 2 – ампула; 3 -наконечникМеланжер
для подсчета эритроцитов представляет
собой капилляр с ампулообразным
расширением и с бусинкой красного цвета
внутри. На меланжере нанесены три метки:
0,5; 1,0; 101.

Рис.2.
Счетная камера. А – вид сверху; Б – вид
сбоку; В – сетка Горяева: 1 – маленький
квадрат, 2 – большой квадрат.

Счетная
камера (рис.2) состоит из толстого
прямоугольной формы стекла с двумя
сетками Горяева, нанесенными на средние
площадки камеры. Кнаружи от желобков,
образующих букву «Н», находятся две
прямоугольные пластинки, к которым
прикладывается покровное стекло. Сетка
Горяева состоит из 225 больших квадратов,
25 из которых разделены поперечными и
продольными полосками на 16 малых.

Незаполненную
счетную камеру помещают под микроскоп
и вначале под малым, а затем большим
увеличением рассматривают сетку, находят
большие и малые квадраты.

Затем
счетную камеру и покровное стекло
промывают водой, протирают марлевым
тампоном, смоченным эфиром, спиртом и
сухой полотняной салфеткой.

Придавливают
покровное стекло к боковым поверхностям
камеры (см. описание камеры).

Осмотическая резистентность эритроцитов

Перед
заполнением камеры выпускают на ватный
тампон две-три капли содержимого из
капилляра смесителя, затем заполняют
камеру: наносят каплю разведенной крови
на среднюю пластинку у края покровного
стекла. В силу капиллярности жидкость
равномерно распределится над сеткой.

После
заполнения камеру оставляют на одну
минуту для равномерного распределения
и оседания эритроцитов.

метода
разведения крови

Для
работы необходимы:
донорская кровь, химические или
серологические пробирки с пробками,
капиллярная пипетка от гемометра Сали,
градуированная пипетка для отмеривания
разводящей жидкости на 1 мл, камера с
сеткой Горяева, 4-5% раствор уксусной
кислоты (подкрашенный метиленовым
синим), дистиллированная вода, микроскоп,
вата.

Проведение
работы. В
чистую пробирку точно отмеривают 4мл
5% раствора уксусной кислоты. Капиллярной
пипеткой от гемометра Сали набирают
кровь до метки (20 мкл) и осторожно выдувают
ее в разводящую жидкость; промывают
этой жидкостью капилляр, пробирку
закрывают пробкой и тщательно перемешивают.

Заполнение
камеры, подсчет лейкоцитов, анализ
результатов и оформление протокола
осуществляют, как указано в работе
3.1.1. Источник ошибок и точность метода
такие же, как и в работе 3.1.1.

по
методу Сали

Гемоглобин
(Hb)
– основной дыхательный пигмент
эритроцитов, относящийся к хромопротеидам
и обеспечивающий ткани кислородом,
состоит из белка – глобина и гема –
соединения протопорфирина IX
с железом. Последний придает гемоглобину
характерную окраску. Присоединение к
гему различных химических групп
сопровождается изменением окраски. На
этом основано определение концентрации
гемоглобина крови.

Для
определения содержания Hb
в крови предложено много различных
методов. Наибольшее распространение
получили колориметрические методы,
основанные на колориметрии производных
гемоглобина. В настоящее время принят
унифицированный гемиглобинцианидный
метод определения количества гемоглобина.
Гемоглобин окисляют в метгемоглобин
(гемиглобин) железосинеродистым калием;

Наиболее
распространенным в прошлом было
определение количества гемоглобина по
методу Сали. Этот метод чрезвычайно
прост и быстро выполним, но недостаточно
точен. Он основан на колориметрии
солянокислого гематина. При смешивании
крови с соляной кислотой Hb
превращается в солянокислый гематин,
имеющий коричневый цвет.

В
норме в крови содержится около 140 г/л
гемоглобина (у женщин 120-140 г/л, у мужчин
130-160 г/л, у новорожденных – 217 г/л).

Фотоколориметр для анализа

Рис.3.
Гемометр Сали

1
– пробирки со стандартным раствором; 2
– пробирка для исследуемой крови; 3 –
пипетка для крови; 4 – пипетка для воды

Для
работы необходимы: донорская
кровь, гемометр Сали, 0.1N
раствор соляной кислоты, дистиллированная
вода.

Проведение
работы

  1. В
    градуированную пробирку гемометра
    наливают до первой метки 0,1N
    раствор соляной кислоты.

  2. Капиллярной
    пипеткой набирают кровь точно до метки
    20 мм и осторожно выдувают ее на дно
    пробирки. Не вынимая пипетки из пробирки,
    промывают ее соляной кислотой, встряхивая
    пробирку, тщательно перемешивают ее
    содержимое. Для завершения реакции
    смеси дают постоять не менее пяти минут.

  3. Специальной
    пипеткой прибавляют к смеси по каплям
    дистиллированную воду, перемешивая
    содержимое палочкой. Это продолжается
    до тех пор, пока цвет исследуемой
    жидкости не сравняется с окраской
    стандартного раствора.

  4. Отмечают
    по шкале, на каком делении стоит уровень
    верхнего края мениска, полученного
    раствора солянокислого гематина. Если
    по шкале пробирки единица измерения
    Hb

    г%, то, чтобы выразить результат в системе
    СИ, умножают найденную цифру на 10.
    Например, Hb
    = 13,2 г% 
    10 = 132 г/л.

Источниками
ошибок могут быть:
выцветшие стандартные растворы в старых
гемометрах; неточное соблюдение
пятиминутной выдержки перед началом
разведения; попадание воздуха в капилляр
с кровью.

Оформление
протокола. Назвать
принцип метода определения количества
Hb,
отметить чем разводится кровь и почему.
Записать найденное количество гемоглобина
и нормальное содержание гемоглобина у
мужчин и женщин (у детей); зарисовать
гемометр Сали и капилляр для взятия
крови.

Вывод.
Сравнить полученные результаты с нормой,
указать соответствует ли норме найденное
количество гемоглобина.

5. Ход занятия.

В
ходе занятия отрабатываются практические
навыки (п.4), обсуждаются основные
контрольные вопросы по теме занятия.

  1. Техника
    взятия крови для общего клинического
    анализа.

  2. Методика
    определения концентрации гемоглобина,
    количества эритроцитов и ретикулоцитов.
    Расчет индексов красной крови: цветовой
    показатель и среднее содержание
    гемоглобина в одном эритроците.
    Диагностическое значение. Гематокритное
    число.

  3. Методика
    определения осмотической резистентности
    эритроцитов и диаметра эритроцитов.
    Определение скорости оседания эритроцитов
    (СОЭ). Диагностическое значение.

  4. Методика
    определения количества лейкоцитов.

  5. Методика
    определения количество тромбоцитов.
    Диагностическая трактовка.

  6. Методика
    сбора мокроты.

  7. Исследование
    мокроты макроскопическое, микроскопическое,
    бактериоскопическое. Понятие о
    бактериологическом методе исследования
    мокроты.

  8. Техника
    проведения плевральной пункции.

  9. Лабораторное
    исследование плевральной жидкости:
    макроскопический, микроскопический,
    физико-химический и бактериологический
    анализ. Методика проведения проб
    Ривальта и Лукерини. Отличительные
    признаки экссудата и транссудата.

11. Бронхоскопия.
Методика проведения. Понятие о биопсии
бронхов и легких.

1.
Клиническая трактовка результатов
общего анализа крови (см. ход занятия,
п.2-5).

2.
Проведение макроскопического,
микроскопического, бактериоскопического
и бактериологического исследования
мокроты (см. ход занятия, п.7).

Что такое осмотическая резистентность эритроцитов, зачем ее определяют

3.
Проведение макроскопического,
физико-химического и бактериологического
исследования плевральной жидкости (см.
ход занятия, п.9).

4.
Клиническая оценка результатов
лабораторного анализа мокроты и
плевральной жидкости (см. ход занятия,
п.7,9).

В
ходе занятия обсуждаются контрольные
вопросы согласно темы занятия и
отрабатываются практические навыки
(п.4.).

1. Разведение крови

В
меланжер кровь набирают до метки «0,5».
Излишки крови собирают марлевым тампоном.

Затем
опускают кончик капилляра смесителя в
стаканчик с гипертоническим (3%) раствором
хлорида натрия и набирают его (раствор)
с помощью резиновой трубки и мундштука
до метки «101», чем достигают разведения
в 200 раз. Гипертонический раствор хлорида
натрия вызывает плазмолиз эритроцитов,
повышающий оптическую плотность клеток.
Во избежание нарушения точности анализа,
нельзя допускать попадания воздуха в
капилляр.

Покачиванием
смесителя, отверстия которого зажимают
между пальцами, кровь тщательно
перемешивают для равномерного
распределения эритроцитов.

3. Физические основы аускультации.

Аускультация
– это метод исследований, заключающийся
в выслушивании звуковых явлений,
возникающих в организме в результате
колебаний тех или других элементов его,
и в суждении по характеру звука о
физическом состоянии организма.

  1. Непосредственная
    аускультация (производится путем
    прикладывания уха к больному).

  2. Посредственная
    аускультация (производится при помощи
    стетоскопа или фонендоскопа).

Достоинствами
непосредственной аускультации являются:

  • позволяет
    выслушивать более слабые и высокие
    звуки;

  • позволяет
    выслушивать сразу большую площадь
    тела;

  • выслушиваются
    естественные звуки;

  • врач
    получает осязательные ощущения (это
    важно при выслушивании непостоянных
    тонов сердца – III,
    IV).

Недостатками
непосредственной аускультации являются:

  • трудность
    в локализации звуков, особенно при
    выслушивании сердца;

  • невозможность
    выслушивания ряда областей грудной
    клетки (надключичные и подмышечные
    области), шеи;

  • негигиеничность.

Достоинствами
посредственной
аускультации являются:

  • гигиеничность;

  • удобство
    для больного и врача;

  • возможность
    локализовать место возникновения
    звуков;

  • возможность
    выслушивать зоны, недоступные
    непосредственному методу;

  • гибкий
    стетоскоп позволяет выслушивать
    больного при любом положении его тела;

  • удобство
    при исследовании детей раннего возраста,
    тяжелых и обездвиженных больных;

  • усиление
    звука.

Недостатками
посредственной
аускультации являются:

  • искажение
    звука (необходимо пользоваться одним
    стетоскопом, врач к нему привязан);

  • большое
    количество дополнительных шумов,
    обусловленных применением стетофонендоскопа.

Возникновение
звука – есть результат маятникообразных
движений (колебаний) выведенного из
состояния покоя тела. Если тело однородно
по своему составу, то оно совершает
периодические колебания, если неоднородно
– непериодические колебания. Колебания
тела вызывают в окружающем воздухе ряд
попеременных сгущений и разрежений,
которые, распространяясь во все стороны
в форме звуковой волны, достигают нашего
уха и вызывают раздражение слухового
аппарата с той же последовательностью
и частотой, с которой колеблется
выведенное из состояния равновесия
тело.

От
величины амплитуды колеблющегося тела
зависит сила или громкость звука (прямая
зависимость). На громкость звука влияет
также расстояние от источника звука.
Чем больше глубина залегания источника
звука (например, в легком), тем меньше
громкость звука. От числа колебаний в
секунду, совершаемых телом, зависит
высота тона, чем больше колебаний, тем
больше высота тона и наоборот.

Звуковые
явления, возникающие в легком, передаются
по воздушным столбам в бронхах до грудной
стенки, вызывая в ней колебания, а затем
через окружающий воздух уху исследующего.
Условия проводимости звука в легких не
вполне благоприятны из-за эластичности
бронхиальных стенок и высокой способности
их к колебаниям, а, следовательно, и к
распространению звуковой волны во все
стороны.

Что такое осмотическая резистентность эритроцитов, зачем ее определяют

При
воспалительном уплотнении легочной
ткани воспалительным экссудатом
пропитывается и ткань между бронхами.
Она становится плотной и составляет
как бы продолжение стенки бронха. Она
менее способна к колебаниям, чем стенки
бронха, тормозит их. Поэтому в самом
воздушном столбе, заключенном в бронхе,
меньше энергии распространяется в
стороны.

Если
проводящая среда имеет одинаковую
частоту колебаний с частотой проводимого
звука, то воздушный столб, заключенный
в бронхе (в полости) играет роль резонатора
и происходит усиление звука. Это
наблюдается в уплотненном легком (звук
до уха проводится без ослабления). Таким
образом, уплотнение легочной ткани
предотвращает ослабление звука и
способствует проявлению усиливающего
действия резонатора.

Так
как проводником звука является в основном
воздух в бронхе, то проходимость бронхов
является необходимым условием для
выслушивания легкого.

Если
в каком-либо месте бронха имеется сужение
его, так что воздух из широкой части,
пройдя сужение, попадает внутрь в широкую
часть, то на месте сужения возникают
завихрения воздуха. В результате этого
происходят колебания стенки бронха, и
в области сужения возникает шум,
называемый стенотическим.

4. Общие
правила аускультации. Правила и техника
аускультации легких.

Общие правила
аускультации.

  1. В
    помещении, где производится выслушивание,
    должно быть возможно более тихо.

  2. В
    помещении, где производят выслушивание,
    должно быть тепло, так как обусловленные
    холодом дрожь, напряжение мышц искажают
    характер дыхания и других аускультативных
    звуков.

  3. Выслушиваемые
    части тела должны быть обнажены.

  4. Волосяной
    покров в выслушиваемой части тела в
    случае необходимости следует сбрить,
    смочить маслом, мыльным раствором или
    водой.

  5. Раструб
    стетоскопа должен быть теплым, его
    следует согреть.

  6. Раструб
    стетоскопа должен быть приложен к телу
    больного всем его краем, герметично.

  7. Следует
    фиксировать стетоскоп к телу больного,
    не прикасаясь к трубкам, так как
    прикосновение к ним создает дополнительные
    шумы.

  8. Стетоскоп
    нельзя прижимать плотно к телу больного,
    так как его плотное прижатие гасит
    колебания поверхности тела, что приводит
    к ослаблению звука. Исключение составляет
    выслушивание высоких звуков, которые
    лучше выслушиваются при значительном
    надавливании стетоскопом на грудную
    клетку.

  9. Оливы
    стетоскопа должны плотно прилегать к
    стенкам наружного слухового прохода,
    что обеспечивает герметичность и
    замкнутость акустической системы, но
    они не должны вызывать боли.

  10. Целесообразно
    пользоваться одним и тем же стетоскопом.

  11. Положение
    больного и врача должно быть удобным.

  12. Следует
    руководить больным, его дыханием,
    другими действиями, целесообразными
    в плане выслушивания.

  13. Выслушиванию
    больных следует посвящать максимально
    много времени, так как это один из самых
    сложных для усвоения методов исследования.

  14. Выслушивая
    больного, следует научиться отвлекаться
    от других посторонних, происходящих
    извне шумов. Следует научиться
    концентрировать свое внимание и слух
    на тех звуках, которые исходят из
    стетоскопа.

Правила аускультации
легких.

  1. Легкие
    лучше всего выслушивать в положении
    больного сидя или стоя.

  2. Необходимо
    соблюдать последовательность выслушивания
    легких: передняя поверхность, боковые
    отделы, задняя поверхность грудной
    клетки.

  3. Следует
    использовать приемы, улучшающие
    проведение звука и облегчающие проведения
    аускультации:

  • при
    выслушивании в подмышечных областях
    больной должен завести руки за голову;

  • при
    выслушивании по лопаточным и
    околопозвоночным линиям больной должен
    скрестить руки на груди и слегка
    наклонить голову вперед.

  1. Больной
    должен дышать глубоко, равномерно,
    медленно, через нос или полуоткрытый
    рот. При этом основные дыхательные шумы
    рекомендуется выслушивать при дыхании
    через нос, а добавочные – при дыхании
    через рот.

  2. Следует
    руководить дыханием больного, давая
    указания по этому поводу или, даже,
    демонстрировать ему, как это следует
    делать, тренируя его.

  3. Первоначально
    целесообразно провести сравнительную
    аускультацию легких, а затем детально
    выслушивать те участки, где были замечены
    патологические изменения.

  4. Вначале
    определяют характер основного
    дыхательного шума, затем определяют
    побочные дыхательные шумы, в конце –
    определяют бронхофонию.

а) шум трения
плевры;

б) амфорическое
дыхание;

в) везикулярное
дыхание;

г) бронхиальное
дыхание над трахеей, гортанью, крупными
бронхами;

д) крепитацию.

Что такое осмотическая резистентность эритроцитов, зачем ее определяют

24. Какие
аускультативные феноме­ны выступают
свидетельством патологического процесса
в лёгких?

а) жёсткое дыхание;

б) пуэрильное
дыхание;

в) бронхиальное
дыхание над долей лёгкого;

г) везикулярное
дыхание;

д) удлинённый
выдох.

25. Что
может служить причиной ос­лабления
везикулярного дыхания?

Что такое осмотическая резистентность эритроцитов, зачем ее определяют

а) скопление
жидкости в плевральных полостях;

б) утолщение плевры;

в) наличие воздуха
в плевральной полости;
г) ателектаз;

д) повышение
эластичности лёгоч­ной ткани.

а) при разлипании
стенок альвеол на высоте вдоха;

б) при набухании
слизистой оболоч­ки бронхов и сужении
их просвета;

в) при спазме мелких
бронхов;

г) при прохождении
воздуха через бронхи с жидким секретом;

д) при прохождении
воздуха через бронхи с вязкой мокротой.

а) возникают в
бронхах при наличии в них жидкого
экссудата;

б) выслушиваются
при воспалении слизистой оболочки
бронхов;

Что такое осмотическая резистентность эритроцитов, зачем ее определяют

в) выслушиваются
при застойных яв­лениях в малом круге
кровообра­щения;

г) выслушиваются
при пневмонии;

д) изменяют характер
или исчезают при покашливании.

28. Что
характерно для крепитации?

а) выслушивается
в обе фазы дыха­тельного цикла;

б) выслушивается
только на высоте вдоха;

в) возникает в
альвеолах при наличии в них небольшого
количества экс­судата;

г) не изменяется
после откашливания;

д) усиливается при
надавливании сте­тоскопом на грудную
клетку.

29. Какое
утверждение в отношении шума трения
плевры неверно?

Что такое осмотическая резистентность эритроцитов, зачем ее определяют

а) образуется
при трении изменённых плевральных
листков друг о друга;

б)
выслушивается одинаково на вдо­хе и
выдохе;

в) не
меняется при кашле;

Нормальные показатели

Норма эритроцитов:

  • Наибольшая — 0,34-0,32%.
  • Наименьшая — 0,48-0,46%.

У детей до 2 лет индекс больше нормы. У пожилых показатель бывает ниже нормального значения.

Что такое осмотическая резистентность эритроцитов, зачем ее определяют

Везикулярное
дыхание возникает при расправлении
легких во время вдоха. При этом стенки
альвеол вследствие быстрого растяжения
внезапно переходят от расслабленного
состояния, в котором они находились в
конце выдоха, в напряженное. Так как
одновременно колеблется огромное
количество альвеол, и расправление их
происходит последовательно, то возникает
протяжный шум, который и является
везикулярным дыханием.

В
норме соотношение фаз вдоха и выдоха
составляет 1:1,1 – 1:1,2. Везикулярное
дыхание занимает в норме всю фазу вдоха,
усиливается к концу вдоха, и продолжается
до 1/3 –1/2 длительности фазы выдоха,
представляет собой продолжительный,
мягкий, дующий шум, напоминающий звук
«ф», произносимый в момент вдоха.


ослабление везикулярного дыхания;


усиление везикулярного дыхания.

Как
первое, так и второе может быть как
физиологическим, так и патологическим.

1)
при толстой грудной стенке вследствие
избыточного отложения жира или сильного
развития мускулатуры;

2)
при поверхностном дыхании;

3)
в тех местах грудной клетки, где слой
легкого тонкий: область верхушек легких
(над правой несколько слабее, чем над
левой), нижние края легких.

Что такое осмотическая резистентность эритроцитов, зачем ее определяют

1)
при сужении воздухоносных путей (гортани,
трахеи или бронхов) вследствие частичной
их закупорки инородным телом, опухолью
или сдавления снаружи увеличенными
лимфоузлами, опухолью, рубцами;

2)
при ограниченном утолщении плевры или
сращении плевральных листков;

3)
при эмфиземе легких вследствие малой
дыхательной экскурсии легких и уменьшения
эластичности альвеолярных стенок;

4)
при наличии в легких рассеянных мелких
очагов уплотнения среди нормальной
легочной ткани за счет уменьшения общей
массы альвеол в аускультативной сфере;

5)
при рефлекторном уменьшении дыхательной
подвижности одной половины грудной
клетки вследствие болей при переломе
ребра, сухом плеврите, межреберной
невралгии;

6)
в начальной и конечной стадии воспаления
легочной доли (в начале крупозной
пневмонии) или части ее (при очаговой
пневмонии) в результате пропитывания
стенок альвеол экссудатом напряжение
их уменьшается, амплитуда их колебаний
становится меньше;

7)
при накоплении в плевральной полости
жидкости или газа (уменьшение дыхательной
экскурсии сжатого легкого; ослабление
звука в силу плохой звукопроводимости
жидкости или газа).

1)
при глубоком и быстром дыхании (во время
или сразу после физической работы);

2)
при тонкой грудной стенке и высокой
эластичности альвеолярных стенок у
детей и подростков – пуэрильное дыхание
(от англ. puer
– мальчик).

Патологическое
усиление везикулярного дыхания.

  1. Викарное
    (заместительное) дыхание – определяется
    над здоровым участком легкого,
    расположенным по соседству с патологически
    измененным, который или слабо, или вовсе
    не участвует в дыхании (например, над
    здоровой половиной грудной клетки,
    если в другой половине имеется
    значительный плевральный выпот или
    пневмоторакс).

  2. Дыхание
    Куссмауля – глубокое, шумное, редкое;
    характерно для некоторых видов коматозных
    состояний, сопровождающихся ацидозом
    (уремическая кома, диабетическая кома,
    печеночная кома).

Качественные
изменения везикулярного дыхания – это
жесткое дыхание, жесткое дыхание с
удлиненным выдохом, саккадированное
(прерывистое) дыхание.

  1. Жесткое
    дыхание – это усиленное везикулярное
    дыхание, которое характеризуется
    низкотональным звуком, отличающимся
    неровным, шероховатым, как бы дребезжащим
    звучанием, занимающим полностью фазы
    вдоха и выдоха. Оно наблюдается при
    неравномерном, незначительном набухании
    слизистой оболочки бронхов, незначительном
    скоплении в их просвете слизи,
    незначительном спазме мускулатуры
    бронхов. Проходя через эти сужения,
    воздух образует завихрения, возникает
    турбулентный поток. Эти завихрения
    становятся источником колебания стенок
    бронхов, которые и обуславливают
    особенности звучания жесткого дыхания.

  2. Жесткое
    дыхание с удлиненным выдохом – признак
    бронхообструктивного синдрома с
    локализацией препятствия движению
    воздуха в мелких бронхах. Степень
    набухания слизистой оболочки бронхов
    или спазма их мускулатуры может быть
    различной. На определенной стадии их
    выраженности возникает такая ситуация,
    что выход воздуха из альвеол (в силу
    пассивности фазы выдоха) затрудняется,
    выдох удлиняется, возникает звук,
    обусловленный турбулентностью потока
    воздуха во время выдоха. Слышимость
    дыхания в фазу выдоха усиливается и в
    силу того, что спадающееся легкое менее
    воздушно и легче проводит звук.

  3. Саккадированное
    (прерывистое) дыхание – это разновидность
    везикулярного дыхания, которое
    характеризуется прерывистостью своего
    звучания. Дыхательный шум выслушивается
    как прерывистый, разделенный паузами,
    особенно на вдохе. Такой вид дыхания
    наблюдается при:

  • неравномерном
    сужении просвета бронхиол вследствие
    закупорки слизью (чаще всего это
    следствие туберкулеза дыхательных
    путей);

  • неравномерном
    сокращении дыхательной мускулатуры
    (миозиты, миастения, ботулизм и др.);

  • неврастении
    и нервном перевозбуждении;

  • переохлаждении.

Патологическое
бронхиальное дыхание – бронхиальное
дыхание, выслушиваемое над участками
легких, где в норме оно не определяется.


отсутствие в данном участке легкого
везикулярного дыхания;


хорошее проведение колебаний бронхов
на грудную клетку.

Виды
патологического бронхиального дыхания.

  1. Инфильтративное
    – выслушивается при уплотнении легочной
    ткани (заполнение альвеол экссудатом,
    кровью и т.д.) при условии проходимости
    бронха.

  2. Ателектатическое
    – выслушивается при компрессионном
    ателектазе легких (альвеолы спадаются
    полностью, но бронхи сохраняют свой
    просвет), это бронхиальное дыхание
    глухое, тихое, слабое, доносится как бы
    издали.

  3. Полостное
    – выслушивается при наличии каверны
    или абсцесса легких, окруженных
    уплотненной легочной тканью и сообщающихся
    с бронхом. Вариантом полостного
    бронхиального дыхания является
    амфорическое
    дыхание (от греч. amphora
    – сосуд с узким горлом) – негромкий,
    низкий и пустой звук, похожий на тот,
    который возникает, если сильно дуть
    над горлом пустого стеклянного сосуда,
    например, бутылки.

Металлическое
бронхиальное дыхание отличается громким
и высоким звенящим как металл тоном и
является признаком высокой плотности
стенки воздушной полости в легком или
открытого пневмоторакса.

Смешанное
(бронховезикулярное, везикулярное с
бронхиальным оттенком) дыхание
характеризуется тем, что на вдохе и
звучит как везикулярное, а на выдохе –
как бронхиальное дыхание. Оно может
быть при пневмосклерозе, очаговой
пневмонии, инфильтративном туберкулезе
легких.

Сухие
хрипы возникают в результате значительного
сужения просвета бронхов за счет
набухания слизистой оболочки (при
воспалении), спазма гладкой мускулатуры
(при бронхиальной астме), деформации
бронхов (бронхоэктазы, пневмосклероз),
наличия в просвете вязкой мокроты
(бронхит, бронхиальная астма и др.).

Характер
сухих хрипов зависит от степени сужения
просвета бронхов, от длины, ширины и
толщины колеблющейся пленки, образованный
вязкой мокротой, от формы, плотности и
однородности состава мокроты.


свистящие (высокие, дискантовые, ronchi
sibilantes),
обычно возникающие в мелких бронхах,
обусловлены бронхоспазмом, слышны во
время вдоха и выдоха, но преимущественно
во время выдоха;


жужжащие (низкие, басовые, ronchi
sonori),
возникающие в бронхах среднего и крупного
калибра, чаще образуются при наличии в
просвете вязкой мокроты (бронхит,
бронхиальная астма и т.д.), слышны во
время вдоха и выдоха, преимущественно
во время вдоха.

Особенностью
сухих хрипов является их протяженность,
т.е. слышимость на протяжении всего
вдоха или выдоха. Сухие хрипы, слышимые
на расстоянии, называются «оральными»
или «дистантными» (признак приступа
бронхиальной астмы).

Влажные
хрипы возникают при прохождении воздуха
через содержащуюся в бронхах или полостях
легких жидкую мокроту, отечную жидкость,
кровь и лопании образующихся пузырьков
воздуха на поверхности жидкости. Влажные
хрипы слышны в обе дыхательные фазы,
напоминают звуки, выслушиваемые при
лопании пузырьков, возникающих при
вдувании воздуха через трубочку в воду.

Что такое осмотическая резистентность эритроцитов, зачем ее определяют

Влажные хрипы
разделяются на мелко-, средне- и
крупнопузырчатые.

Мелкопузырчатые
хрипы возникают в мельчайших бронхах,
выслушиваются во время вдоха и выдоха,
но преимущественно во время вдоха,
напоминают лопанье пузырьков в
газированном напитке. Они выслушиваются
в большем количестве, чем крупнопузырчатые,
они более тихие, высокие и короткие.

Среднепузырчатые
хрипы возникают в бронхах среднего
калибра, выслушиваются во время вдоха
и выдоха, но преимущественно во время
вдоха, напоминают звуки, выслушиваемые
при лопании пузырьков, возникающих при
вдувании воздуха через тонкую трубочку
в воду, по характеристике звучания
занимают среднее место между мелко- и
крупнопузырчатыми.

Крупнопузырчатые
и среднепузырчатые хрипы характерны
для отека легких. При этом дыхание имеет
клокочущий характер (симптом «кипящего
самовара»).

Крупнопузырчатые
хрипы возникают в крупных бронхах, в
трахее (трахеальные хрипы), легочных
полостях и больших бронхоэктазах,
выслушиваются во время вдоха и выдоха,
но преимущественно во время вдоха,
напоминают звуки, выслушиваемые при
лопании пузырьков, возникающих при
вдувании воздуха через крупную трубочку
в воду.

3.1. Определение скорости оседания эритроцитов (соэ)

по
Панченкову

При
стоянии стабилизированной крови
эритроциты в силу тяжести оседают. При
этом кровь делится на два слоя: верхний
(бесцветный, прозрачный) – плазму и нижний
(красный, непрозрачный) – эритроциты.

Скорость
оседания эритроцитов сильно колеблется
в зависимости от состояния организма.

Рис.4.
Прибор Панченкова

Что такое осмотическая резистентность эритроцитов, зачем ее определяют

Для
определения СОЭ применяют прибор
Панченкова. Прибор представляет собой
штатив, в котором могут быть укреплены
в вертикальном положении специальные
капилляры. Капилляры градуированы в
миллиметрах. Метка «О» стоит на расстоянии
100 мм от нижнего конца. На капилляре есть
еще две метки: «К» (кровь) – на уровне
«нуль» и метка «Р» (реактив) – на уровне
50 мм.

Для
работы необходимы:
прибор Панченкова, часовое стекло, вата,
5% раствор лимоннокислого натрия (цитрат).

Проведение
работы

  1. Капилляр
    промывают 5% раствором цитрата. Затем
    набирают цитрат до метки «Р» (реактив)
    и выдувают его на часовое стекло.

  2. В
    тот же капилляр двукратно набирают
    донорскую кровь до метки «К».

  3. Обе
    порции крови смешивают на часовом
    стекле с имеющимся цитратом.

  4. Полученную
    таким образом смесь крови с цитратом
    (в соотношении 4:1) набирают в капилляр
    до метки «О» и ставят капилляр в штатив.

Следует
иметь в виду, что капилляр держат
горизонтально, погрузив его кончик в
основание капли, при этом кровь по закону
капиллярности сама заполняет капилляр.
Через час смотрят, скольким миллиметрам
равна высота образовавшегося вертикального
столбика плазмы в капилляре. Число
миллиметров плазмы и является мерой
СОЭ.

Норма
СОЭ от 1 до 10 мм/час у мужчин, от 2 до 15
мм/час у женщин, до 45 мм/час у беременных
женщин.

Обратите
внимание, что СОЭ нельзя вычислять,
измеряя сколько плазмы образовалось
за 30 минут и умножая на 2, т.к. процесс
оседания протекает во времени неравномерно.

Оформление
протокола.
Зарисовать прибор Панченкова и отдельно
капилляр с метками. Отметить чем и в
каком соотношении разводится кровь.

Вывод.
Указать
нормальные величины СОЭ у мужчин, женщин
(детей), сравнить с ними полученные
результаты. Объяснить предполагаемый
механизм СОЭ, как влияет на СОЭ увеличение
содержания глобулинов, фибриногена.

3.3. Определение группы крови системы резус

д) крепитацию.

Что такое осмотическая резистентность эритроцитов, зачем ее определяют

д)
выслушивается только на выдохе.

Эталоны
ответов

1.
А, В, Г, Д. 2. А, В. 3. В. 4. Б, В, Д. 5. В, Г, Д. 6. Б,
А, Г. 7. Б. 8. Б, Г. 9. А. 10. Б, В, Г. 11. Б, Г. 12. Д,
Е. 13. В, Г, Д. 14. В. 15. Д, В. 16. А, В. 17. Г. 18. Д.
19. Г. 20. В. 21. Г. 22. А. 23. В, Г. 24. А, В, Д. 25. А,
Б, В, Г. 26. Б, В, Д. 27. Г, Д. 28. Б, В, Г. 29. Д.

Глава 2.

1. Учебные и
воспитательные цели, мотивация для
усвоения темы, требования к исходному
уровню знаний

1.1. Цель занятия

Научиться
технике взятия крови для общего
клинического анализа, собирания мокроты,
взятия плевральной жидкости. Обучиться
методике определения основных компонентов
общего анализа крови, ознакомиться с
лабораторными исследованиями мокроты
и плевральной жидкости, клинической
трактовке результатов общего анализа
крови, анализов мокроты и плевральной
жидкости.

1.2.Мотивация
для усвоения темы

Что такое осмотическая резистентность эритроцитов, зачем ее определяют

Полное
обследование пациента предполагает
использование основных (расспрос,
осмотр, пальпация, перкуссия, аускультация)
и дополнительных (лабораторных и
инструментальных) методов исследования.
При постановке диагноза приоритет
следует отдавать результатам расспроса
и физикальных исследований, однако при
ряде заболеваний решающую роль могут
играть данные вспомогательных, в
частности, лабораторных исследований.

На
основании реакции агглютинации
эритроцитов установлено, что кровь
каждого человека принадлежит к одной
из четырех групп. Кровь различных групп
отличается наличием агглютининов и
агглютиногенов. Агглютинины (склеивающие
вещества) находятся в плазме. Агглютиногены
– вещества, способные склеиваться,
содержатся в эритроцитах.

Имеются
два вида агглютиногенов – А и В и
соответственно два вида агглютининов
– 
и .
Реакция агглютинации, т. е. склеивание
эритроцитов, наступает лишь при смешении
одноименных агглютининов и агглютиногенов,
например 
и А или 
и В. Агглютинацию нельзя смешивать с
процессом свертывания крови – выпадением
фибрина в виде нерастворимых нитей.

Определение
группы крови имеет практическое значение
для переливания крови. При этом
учитывают, прежде всего, свойства
эритроцитов донора, так как плазма
вводится в малом количестве и, разводясь
в крови реципиента, теряет свои
агглютинирующие качества. Однако при
переливании значительного
количества
крови, учитывают и агглютинины донора.

Для
работы необходимы:
донорская кровь, стандартные сыворотки
I,
II
и III
групп двух
разных серий,
предметные стекла (чашка Петри), пипетки,
стеклянные палочки.

Проведение
работы.
Группы крови определяют по свойствам
эритроцитов, которые устанавливают с
помощью стандартных сывороток, содержащих
известные агглютинины.

  1. На
    чистые чашки Петри в обозначенные
    участки наносят по 1 капле сыворотки
    I,
    II
    и III
    групп двух
    серий
    ,
    содержащих соответственно агглютинины:
    I
    – 
    и ,
    II
    – 
    и III
    – .

  2. В
    каждую каплю сыворотки с помощью
    стеклянных палочек или разных углов
    предметных стекол вносят небольшое
    количество донорской крови и тщательно
    размешивают кровь в капле сыворотки
    палочкой до тех пор, пока смесь не примет
    равномерного розового цвета.

  3. Покачивают
    чашку Петри в течение 5 минут. При
    наличии агглютинации капля становится
    прозрачной, а эритроциты склеиваются
    в виде комочков.

  4. По
    мере наступления агглютинации, но не
    раньше, чем через 3 минуты в каждую смесь
    добавляют по одной капле физиологического
    раствора для предупреждения образования
    «монетных столбиков» из эритроцитов.

  5. Определяют
    наличие агглютинации в каждой капле и
    устанавливают группу крови.

  • Отсутствие
    агглютинации во всех трех каплях
    говорит об отсутствии агглютиногенов
    А и В в эритроцитах исследуемой крови,
    такая кровь принадлежит O(I)
    группе.

  • Если
    агглютинация произошла с сыворотками
    I
    и III
    групп, содержащих соответственно
    агглютинины 
    и ,
    то, следовательно, эритроциты исследуемой
    крови содержат агглютиноген А и эта
    кровь принадлежит А(II)
    группе.

  • Если
    агглютинация произошла с сыворотками
    I
    и II
    групп, содержащих агглютинины 
    и ,
    то эритроциты исследуемой крови
    содержат агглютиноген В и эта кровь
    принадлежит В(III)
    группе.

  • Наличие
    агглютинации в сыворотках всех трех
    групп указывает на присутствие в
    эритроцитах исследуемой крови
    агглютиногенов А и В, следовательно,
    она принадлежит АВ(IV)
    группе. Однако, в этом случае для
    исключения неспецифической агглютинации
    эритроцитов необходимо провести
    дополнительное исследование со
    стандартной сывороткой группы АВ (IV).
    Отсутствие агглютинации в этой капле
    позволит считать реакцию специфической
    и отнести исследуемую кровь к АВ(IV).

Источниками
ошибок могут быть:

  1. Оценка
    реакции отрицательной
    при фактическом
    наличие агглютинации. Это может быть
    обусловлено:

    1. Поздней
      или слабовыраженной агглютинацией в
      связи с малой активностью стандартных
      сывороток;

    2. Нарушением
      соотношения 1:10 при взятии большого
      количества крови;

    3. Наличием
      температуры воздуха большей, чем 25оС.
      В таких случаях исследования проводят
      при охлаждении стекла.

  2. Оценка
    реакции положительной
    при практическом отсутствии агглютинации.
    Это может быть обусловлено:

    1. Образованием
      «монетных столбиков»;

    2. Наличием
      панагглютинации, которая развивается
      при

t=15
оС; для ее
исключения следует повторить определение
при более высокой температуре;

    1. Подсыханием
      сывороток и образованием по краям
      капель «зернистости», принимаемой за
      агглютинацию. Это может быть в тех
      случаях, когда чтение результатов
      производится более чем через 5 минут.

Оформление
протокола. Записать
принцип метода определения группы
крови, ход работы. Зарисовать полученные
результаты: обозначить номер группы
крови, агглютинины стандартных сывороток
и отсутствие или наличие агглютинации,
например, –

группа
кровинеизвестная
кровь (эритроциты)

агглютинины
сывороток

Вывод.
Назвать и
правильно записать группу крови.
Обосновать полученный результат. Указать
в каких случаях исследуемая кровь может
быть использована в качестве донорской.
Нарисовать схему совместимости групп
крови системы АВО.

с
применением стандартной сыворотки

Для
работы необходимы:
донорская кровь, универсальная сыворотка,
содержащая анти-Д-антирезус-антитела,
2 пробирки, пипетки, физиологический
раствор, микроскоп.

Проведение
работы

  1. В
    обе пробирки внести по одной капле
    исследуемых эритроцитов (донорской
    крови). Затем добавить по 2 капли
    универсального реагента (сыворотки,
    содержащей антирезус-Д-агглютинины).

  2. Содержимое
    пробирок перемешать, положив их сначала
    на один бок (в течение 1,5 мин), затем –
    на другой на 1,5 мин. Такие манипуляции
    усиливают растекание смеси по стенкам
    пробирок и ускоряют агглютинацию. Как
    правило, агглютинация наступает в
    течение первой минуты, но для образования
    устойчивого комплекса «антиген-антитело»,
    а также ввиду возможности замедленной
    реакции при слабовыраженной
    агглютинабельности эритроцитов,
    наблюдение проводят 3 мин. Через 3 мин,
    оценивают результаты.

  3. Перед
    чтением результатов, для исключения
    неспецифической агрегации эритроцитов,
    добавляют 5-8 мл физиологического
    раствора хлористого натрия. Смесь
    перемешивают, не взбалтывая, путем
    одно-двухкратного перевертывания
    пробирок.

  4. Оценку
    результатов проводят визуально.
    Появление хлопьев из эритроцитов
    (агглютинатов) на фоне прозрачной
    жидкости указывает на наличие
    резус-фактора в исследуемой крови
    (положительная реакция). При отрицательной
    реакции в пробирке видна равномерно
    окрашенная в розовый цвет, слегка
    опалесцирующая жидкость.

Оформление
протокола. Записать
принцип метода, ход работы. Зарисовать
результаты реакции при микроскопическом
исследовании, например,

Вывод.
Назвать и
правильно записать группу крови,
например, кровь резус положительная
(Rh )
или резус отрицательная (Rh-).
Обосновать это заключение. Дать
определение резус-иммунизации. Зарисовать
схему резус-иммунизации крови.

3. Физические основы аускультации.

Проведение
работы

Шумы,
возникающие в связи с дыхательными
движениями грудной клетки и выслушиваемые
хотя и на фоне основных дыхательных
шумов, но отдельно от них, называются
добавочными дыхательными шумами.
Добавочные дыхательные шумы всегда
являются признаком патологического
процесса легких, бронхов или плевры.

Они
возникают в трахее, бронхах, альвеолах,
кавернах, абсцессах, бронхоэктазах, в
плевральной щели и вызываются наличием
в них посторонних масс (слизи, гноя,
экссудата, отечной жидкости, мокроты,
крови).

б)
выслушивается в подлопаточной области;

Что такое осмотическая резистентность эритроцитов, зачем ее определяют

в)
выслушивается в межлопаточной области
на уровне II-IV
грудных по

звонков;

г)
не выслушивается над пространством
Траубе.

15.
Крепитация выслушивается при :
а)
остром бронхите;
б) эмфиземе легких;

в) компрессионном ателектазе;

г) закрытом пневмотораксе;
д)
диффузном пневмосклерозе.

16.
Влажные мелкопузырчатые звонкие хрипы
наблюдаются при :
а)
очаговой пневмонии;
б) остром
бронхите;
в) сердечной астме;

г) экссудативном плеврите;

17.
При выслушивании легких больного
выявлены отрывистые звуки, появляющиеся
на высоте вдоха и напоминающие треск
волос при растирании вблизи уха. Выявлено
наличие:
а)
сухих хрипов;
б) влажных незвонких
хрипов;
в) влажных звонких хрипов;
г)
шума трения плевры;
д) крепитации.

18.
Сухие дискантовые хрипы выслушиваются
у больных с:
а)
сухим плевритом;
б) крупозной пневмонией
I стадии;
в) крупозной пневмонией II
стадии;
г) абсцессом легкого;
д)
бронхиальной астмой.

19.
Для шума трения плевры характерно все,
за одним исключением:
а)
выслушивается на вдохе и выдохе;
б)
усиливается при надавливании стетоскопом;

в) напоминает хруст снега;
г)
изменяется или исчезает (на короткое
время) после кашля;
д) слышится при
имитации вдоха и выдоха, когда больной
плотно закрыл рот и нос.

20.
Влажные мелкопузырчатые звонкие хрипы
выслушиваются при:
а)
хроническом бронхите;б)
экссудативном плеврите;
в) очаговой
пневмонии;
г) обтурационном ателектазе;

д) эмфиземе легких.

21.
Жесткое дыхание выслушивается при:
а)
сухом плеврите;
б) экссудативном
плеврите;
в) компрессионном ателектазе;

г)
хроническом бронхите;
д) эмфиземе
легких.

22.
При аускультации легких выслушивается
жесткое дыхание, что наблюдается при:

а)
остром бронхите;
б) в стадию уплотнения
крупозной пневмонии;
в) эмфиземе
легкого;
г) обтурационном ателектазе;

д) компрессионном ателектазе.

д) крепитацию.

Эталоны
ответов

Глава 2.

1.1. Цель занятия

5. Ход занятия.

Что такое осмотическая резистентность эритроцитов, зачем ее определяют

а)
очаговой пневмонии;

б)
бронхите;

в)
неполном компрессионном ателектазе;

г)
в яремной ямке;

д)
над верхушкой правого легкого.

а)
выслушивается при бронхите;

б)
выслушивается только во время вдоха;

в)
обусловлено незначительнымсужением
просвета бронхов;

г)
все ответы верны.

1)
пневмонии;

2)
бронхите;

3)
абсцессе легких;

4)
сухом плеврите;

5)
кавернозном туберкулезе.

Верно:
А – 1, 2, 3. Б – 2, 3, 4. В – 1, 3, 5. Г – 1, 2.

1.
Гистологические особенности клеток
крови.

2.
Нормальная физиология системы
кроветворения.

3.
Анатомия и
гистология верхних и нижних дыхательных
путей.

4. Анатомические
и гистологические особенности строения
плевры.

Что такое осмотическая резистентность эритроцитов, зачем ее определяют

5.
Функции плевры.

Проведение
работы

1. Техника взятия крови для общего клинического анализа.

Взятие
крови для общего клинического анализа
крови производят путем укола в мякоть
IV
пальца левой руки или мочку уха. Для
укола палец обрабатывают ватным шариком,
смоченным раствором антисептика, чаще
всего септоцида. Укол лучше производить
сбоку, где более густая капиллярная
сеть, на глубину 2-3 мм в зависимости от
толщины кожи.

Не
рекомендуется брать кровь сразу после
физической и умственной нагрузки, приема
медикаментов, физиотерапевтических
процедур, диагностических манипуляций.
Необходимо производить забор крови
натощак. Повторные исследования
желательно проводить в одни и те же
часы, поскольку морфологический состав
крови подвержен колебаниям на протяжении
суток.

Для
исследования гемограммы используют
пробирочный метод взятия крови. Точная
дозировка крови и разводящих жидкостей
достигается с помощью калиброванных
пипеток и дозаторов.

1)
количество гемоглобина;

2)
количество эритроцитов;

3)
индексы красной крови (цветовой показатель
и среднее содержание гемоглобина в
одном эритроците);

Что такое осмотическая резистентность эритроцитов, зачем ее определяют

4)
скорость оседания эритроцитов (СОЭ);

5)
гематокритное число;

6)
осмотическая резистентность эритроцитов
и их диаметр;

7)
количество ретикулоцитов;

8)
количество лейкоцитов и лейкоцитарная
формула;

Что такое осмотическая резистентность эритроцитов, зачем ее определяют

9)
количество тромбоцитов.

2.
Методика
определения концентрации гемоглобина,
количества эритроцитов и ретикулоцитов.
Расчет индексов красной крови: цветовой
показатель и среднее содержание
гемоглобина в одном эритроците.
Диагностическое значение. Гематокритное
число.

Предложено
много методов определения концентрации
гемоглобина. Важнейшие из этих методов
– колориметрические. Чаще колориметрируют
цветные производные гемоглобина: хлорид
гематина, цианметгемоглобин,
карбоксигемоглобин и др. Концентрацию
гемоглобина измеряют фотоэлектроколориметрами,
приборами ГФ-2 и ГФ-3, гемоглобинометрами
при автоанализаторах.

Унифицированным
является цианметгемоглобиновый
фотометрический метод. Он основан на
превращении гемоглобина в цианметгемоглобин
при добавлении к крови реактива (раствора
Драбкина), содержащего железосинеродистый
калий и цианид калия. Концентрацию
цианметгемоглобина измеряют фотометрически,
а расчет количества гемоглобина
производят по калибровочному графику.

Гематиновый
метод Сали основан на превращении
гемоглобина при добавлении к крови
хлористоводородной кислоты в хлорид
гематина (хлоргемин) коричневого цвета,
интенсивность окраски которого
пропорциональна содержанию гемоглобина.
В настоящее время этот метод не имеет
широкого применения.

Что такое осмотическая резистентность эритроцитов, зачем ее определяют


у женщин 120 – 150 г/л;


у мужчин 130—
160 г/л
.

Увеличение
концентрации гемоглобина наблюдается
у людей, живущих в условиях высокогорья,
при обезвоживании у работников горячих
цехов, после обильной рвоты и при диарее,
при массивных ожогах, при эритремии и
др.

Уменьшение
концентрации гемоглобина наблюдается
при анемиях, а так же при обильном
употреблении жидкости, гемодилюции
лекарственными инфузионными средствами
и др.

Определение
количества эритроцитов крови выполняется
следующими методами:

  1. Подсчет
    эритроцитов в счетной камере с сеткой
    Горяева.

Принцип
метода: в
строго определенном объеме каме­ры
подсчитывают под микроскопом клеточные
элементы, а затем производят перерасчет
полученного результата на 1 мкл крови.
С целью уменьшения количества клеток,
подлежащих подсчету, кровь предварительно
разводят в смесителях или пробирках.

Оборудование и
реактивы:

  1. смесители
    (меланжеры) или пробирки для разведе­ния
    крови;

  2. 3
    % раствор хлорида натрия или жидкость
    Гайема для разведения эритроцитов
    (ртути хлорид – 0,5 г; натрия сульфат – 5,0
    г; натрия хлорид – 1,0 г; вода дистиллиро­ванная
    – до 200 мл);

  1. счетная
    камера Горяева;

  1. микроскоп.

Смесители
представляют собой капиллярную пипетку
с резервуаром, содержащим бусинку,
способствующую смешиванию крови с
жидкостью для разведения. На сме­сителе
нанесены метки: одна – 0,5, другая – перед
входом в резервуар – 1,0, третья – у выхода
из ампулы – 101. При набирании крови в
пипетку до метки 0,5 она будет разве­дена
в 200 раз, до 1,0 – в 100 раз.

Счетная
камера представляет собой стеклянную
плас­тинку с выгравированной или
наклеенной сеткой Горяе­ва. Обычно
на одной пластинке имеются две сетки,
разде­ленные между собой глубокой
канавкой, что позволяет ис­пользовать
одну сетку для подсчета эритроцитов, а
другую – для подсчета лейкоцитов.

По
краям сеток находятся воз­вышения, к
ним притираются покровные стекла,
которые образуют верхнюю границу камеры.
Притирать покров­ные стекла нужно
очень плотно до появления радужных
колец (так называемых колец Ньютона),
ибо только в этом случае будут соблюдены
необходимые высота (1/10 мм) и объем счетной
камеры.

Ход
исследования: в
сухую чистую пробирку или сме­ситель
отмеривают раствор хлорида натрия или
жидкость Гайема. Пипеткой от гемометра
Сали набирают кровь из пальца, вытирают
кончик пипетки марлей или фильтро­вальной
бумагой, выдувают кровь на дно пробирки
с жидкостью для разведения. Подготавливают
камеру Горяева.

Интерпретация
полученных данных. Подсчет
эрит­роцитов производят спустя 1-2 мин
после заполнения ка­меры (когда
эритроциты осядут на дно камеры) при
малом увеличении микроскопа (объектив
8х, окуляр – 10х или 15х) и при затемненном
поле зрения (при опущенном кон­денсоре
или прикрытой диафрагме).

Считать
эритроциты необходимо в 5 больших
квадратах, т. е. в 80 маленьких, расположенных
по диагонали. Подсчету подлежат все
эритроциты, лежащие внутри малого
квадрата, и те, кото­рые находятся на
левой и верхней линиях. Эритроциты,
расположенные на правой и нижней линиях,
не считают, так как они будут учтены в
следующем квадрате.

Х=(А х 4000 х В)/Б,

где
X
– количество форменных элементов в 1 мкл
крови; А – количество
форменных элементов, сосчитанных в
опреде­ленном количестве малых
квадратов (для эритроцитов – в 80); Б –
количество сосчитанных малых квадратов
(80); В – степень разведения крови (для
подсчета эритроцитов -100 или 200); 4000 –
величина, умножая на которую, мы получаем
количество клеток в 1 мкл (1 мм3),
так как объ­ем 1 маленького квадрата
равен 1/4000 мм.

Для
перевода в систему СИ (пересчет на 1 л
крови) по­лученную цифру умножают на
106
(или количество целых единиц умножают
на 1012).

Методика
подсчета эритроцитов в счетной камере
дос­таточно точна (ошибка может
достигать 2,5 %), но весьма трудоемка.
Ошибки могут быть обусловлены:
образовани­ем сгустка, недостаточным
количеством подсчитанных квадратов,
несоблюдением условий, обеспечивающих
правильную высоту счетной камеры
(притирание покров­ных стекол без
образования радужных колец), неравно­мерным
заполнением камеры (образование пузырьков
воздуха), подсчетом эритроцитов без
выжидания 1-2 мин (эритроциты не успевают
осесть и результат оказывается
заниженным), плохо вымытыми смесителем
и счетной ка­мерой, недостаточной
квалификацией лаборанта, выпол­няющего
исследование.

  1. Фотометрический
    метод подсчета количества эритроцитов
    – основан на фотометрическом измерении
    степени погашения света определенных
    длин волн взвесью эритроцитов. Процент
    задержанного света прямо пропорционален
    числу эритроцитов. Для этого используют
    приборы типа эритрогемометров и
    электрофотоколориметры.

  2. Электронно-автоматический
    метод. Используются приборы автоматического
    счета частиц крови, работающие по
    импульсному и сцинтиляционному принципу
    (счетчики «Целлоскоп» и «Культер»,
    автоанализаторы «Техникон»).


у женщин 3.7 – 4.7 х 1012/л;


у мужчин 3,9
– 5,1 х
1012/л.

Что такое осмотическая резистентность эритроцитов, зачем ее определяют

1)
при эритремии (абсолютный первичный
эритроцитоз);

2)
при гипоксии: обструктивная вентиляционная
недостаточность, при наличии
альвеолярно-капиллярного блока –
фиброзирующий альвеолит и легочные
васкулиты, врожденные пороки сердца с
шунтом справа налево и др;

3)
при гемоглобинопатиях (наследственные
заболевания, характеризующиеся наличием
в эритроцитах аномальных гемоглобинов);

4)
при вторичных абсолютных эритроцитозах,
связанных с повышенной продукцией
эритропоэтинов (рак почек, гидронефроз
и поликистоз почек, рак печени и др.);

5)
при вторичных абсолютных эритроцитозах,
связанных с избытком адренокортикостероидов
или андрогенов (феохромоцитома, синдром
/ болезнь Иценко-Кушинга, гиперальдостеронизм);

6)
при относительных эритроцитозах
вследствие обезвоживания, стрессов,
алкоголизма, повышенной физической
нагрузки, проживания в условиях
высокогорья и др.

Уменьшение
количества эритроцитов характерно для
анемий различного происхождения. От
истинной анемии, характеризующейся
абсолютным уменьшением эритроцитарной
массы, нужно отличать анемию
(эритроцитопению) вследствие гидремии
(снижение гематокрита из-за увеличения
объема плазмы).

Уменьшение
количества эритроцитов (анемия,
эритроцитопения) наблюдается при
постгеморрагических анемиях, анемиях
вследствие недостаточного кровеобразования
(железодефицитная, витамин-В12- и
фолиеводефицитная), анемиях в результате
усиленного распада эритроцитов
(гемолитические), железоперераспределительных
и метапластических (при опухолевых
заболеваниях крови) анемиях и др.

, , ,
Поделиться
Похожие записи